三甲病理学习现场
「白求恩·肿瘤病理学社」项目之「三甲病理现场」,旨在促进国内相关疾病病理诊断的规范化、增强相关分子检测意识,提高诊断水平。
第十三场直播会议中四川省肿瘤医院郭鹏教授的分享主题是《非小细胞肺癌少见突变检测》,今天为大家带来的是配套学习笔记。
肺癌分子检测的现状
临床实践指南解读精准治疗时代下的肺癌分子分型
图1
基于肺癌新靶点的发现和药物研发,以及NMPA IVD的支持获批,中国已进入精准医疗时代;从2010年到2019年,中国肺癌分子检测数量每年增加31.8%。
图2
图3
NSCLC已进入Biomarker指导的精准治疗时代
基于biomarker精准治疗,目前FDA已批准多个靶向药物用于晚期肺腺癌患者;
NCCN指南推荐对于晚期NSCLC优先biomarker检测指导临床用药选择。
肺癌少见突变分子检测方法及进展
实践指南解读肺癌分子检测方法
每种检测方法都有优势和局限性,临床选择需综合考虑各项因素,主要包括:
• 敏感性
• 特异性
• 标本类型/数量/质量
• 检测成本(时间、用量等)
• 覆盖基因变异的种类/数量
• 其他……
图4
基因异常检测:方式及平台
基因突变:Sanger, RT-PCR, dPCR, NGS:EGFR, KRAS, CMETE14, BRAF, PI3KCA, ALK……
基因易位:FISH, RT-PCR, IHC, NGS:ALK, ROS1, RET, NTRK,NRG1/2, FGR2……
基因扩增:FISH, IHC, NGS:CMET, HER2, EGFR……
基因表达:IHC, RT-PCR, NGS:ALK, ROS1, CMET, RET,NTRK1/2/3, FGFR1/2/3, HER2, EGFR, PDL1……
图5
检测标本:组织标本为首选,血液标本仅为补充 液体标本 无法替代组织标本,其局限性体现在:
敏感性低,假阴性率30%;
无法诊断肿瘤组织学转化(小细胞肺癌转化);
血浆检测所覆盖的基因突变范围还未及全面NGS分析的复杂度;
检测所有临床相关的基因重排仍存争议。
国内外指南:组织标本仍为首选,血液标本因敏感性不足,不能进行独立检测,仅作为组织标本不可及时的补充;ctDNA阴性,需要组织标本再次验证。
ALK
ALK突变频率在3%~7%之间,中国人群约5%。不同种族间的ALK+ NCSLC发生率相对一致。
图6 最早1994年在sciencereport上Thoms.Look发表了ALK融合相关研究
2007年首次在非小细胞肺癌中发现EML4-ALK融合类型,并证实为肺癌的驱动基因;目前已发现有约27种ALK融合变异形式。
图7
非小细胞癌中ALK基因融合类型有EML4-ALK、KIF5B-ALK、KLC1-ALK、TFG-ALK和ALK-PTPN3等,其中EML4-ALK融合基因最为常见。
指南共识均推荐:ALK作为一线核心驱动基因检测
图8
NMPA批准四种方法用于ALK融合的检测
图9 研究表明,ALK检测方法之间具有较高的一致性(大多数>95%)
NSCLC中ALK检测专家共识
《中国非小细胞肺癌ALK检测临床实践专家共识(2019版)》较2013年版诊断共识和2015年版肺癌诊疗指南:进一步扩大和明确了NSCLC的ALK检测人群;将检测方法从原来的3种扩大到4种;新增了ALK检测的标本类型、变异类型、室内外质控、耐药机制检测等内容;检测策略方面也做了更新。
ALK检测主要技术平台方法比较
图10 FFPE:福尔马林固定石蜡包埋;FISH:荧光原位杂交;IHC:免疫组化;NGS:二代测序;RT:逆转录
EML4-ALK融合是最常见的ALK融合类型
目前已发现超过19种融合伴侣基因,其中EML4-ALK融合约占80%;
EML4-ALK融合中最常见的变体亚型为V1和v3a/b。
根据EML4基因不同的断裂位点,目前至少发现了20多种EML4-ALK融合亚型, 其中最常见的是:
V1: 外显子13与ALK的外显子20融合[E13; A20]——长融合;
V3a / b:EML4的外显子6a / b与ALK的外显子20融合[E6a / b; A20]——短融合;[E6a / b; A20]——短融合。
EML4-ALK不同变异体的结构域的区别
•EML4的主要结构域包括BASIC结构域,HELP结构域和WD结构域。它们对ALK同源二聚体的形成和活化是非常重要的;
• 缺乏BASIC结构域,即使ALK存在也无法成瘤。HELP区域对激活下游信号非常重要,V3缺乏HELP区域,可能成瘤性减弱,对ALK TKI治疗敏感性降低EML4的WD40疏水区影响ALK融合蛋白的稳定性;
• V2疏水区较长,半衰期最短。它和ALK-TKI结合后降解地最快,从而对ALK抑制剂最敏感。
EML4-ALK V3变体生存获益更短
图11
EML4-ALKV3驱动的NSCLC
• 更快的转移和扩散
• 更早的TKI耐药
•TKI耐药主要通过ALK的二次突变,较少通过旁路激活
• 更早的化疗进展
• 更早的颅内放疗进展
• 更短的总生存OS
BRAF
致癌性BRAF信号激活MAPK信号通路
BRAF是RAF激酶家族成员之一,位于MAPK信号通路( RAS-RAF-MEK-ERK )中;
异常激活能促进细胞的生长、增殖及凋亡。
突变是否具有激酶活性
激酶活性是否依赖于RAS活化
BRAF基因二聚化
BRAF基因改变分类
BRAFV600常用检测方法
• NCCN指南推荐——BRAF分子检测部分:
• 目前推荐的检测方法包括:NGS(最常用)、 RT-PCR、Sanger;
• IHC方法仍需进一步临床验证。
BRAF检测方法比较
图12
检测BRAF突变时需注意肿瘤的异质性,同一患者的原发灶与转移灶之间的分子遗传学改变有一定差异。原发灶与转移灶不一致的原因:
• 肿瘤进展中的异质性;
• 样本选择异质性的存在。
建议1个原发灶+多个转移灶同时进行BRAF的分子检测。
MET
肺癌MET失调的检测方法
每一种检测方法都有其优点和局限性,检测和诊断方法的选择需要考虑临床标本和可行性。
图13
METex14跳突检测面临的挑战
IHC检测存在较高假阴性率(漏诊)。
MET ex14跳跃突变不是单一的“热点突变”,是一组围绕MET 14外显子剪切位点区域的不同突变、插入缺失等各种变异(可能发生在内含子区域),最终导致DNA转录成mRNA时MET ex14被剪切。
METex14 跳突检测:DNA vs RNA-based NGS
图14
MET扩增包括原发扩增和继发扩增
FISH方法检测MET扩增
MET拷贝数增加的两种形式
• 多倍体:整个7号染色体发生扩增:单条染色体上拷贝数未增多,MET GCN ≥5,MET/CEP7<2
• 定点扩增:7号染色体上的MET基因发生扩增:单条染色体上多个拷贝数,MET/CEP7≥2
相比FISH,NGS对MET扩增的检测敏感性较差,容易漏诊 组织NGS检测的特点:
• 能检出大部分定点扩增;
• 但不易检出多倍体;
• 约45%的FISH阳性未被组织NGS检测出。
MET扩增检测未来待解决的问题
• MET多倍体的扩增是否真的为肿瘤驱动变异?
• 如何确定判定MET扩增的阈值?
ROS1/RET/NTRK
肺腺癌中ROS1基因融合特征:
• 2003年首次在GBM细胞株中发现FIG-ROS1的融合,并证明是GBM发生的驱动突变;
• ROS1一般与其他驱动基因不共存,绝大部分与EGFR和ALK突变互斥;
• ROS1融合可在DNA,RNA和蛋白水平均能被检测。
IHC/FISH/RT-PCR/NGS方法检测ROS1融合都具有局限性
IHC 检测ROS1融合有较高的假阴性率
图15 Abbreviations:FN,false-negative; FP, false-positive; TN, true-negative; TP, true-positive.
NCCN指南指出(FISH/RT-PCR/NGS) 检测ROS1方法都具有局限性
图16
RET和NTRK基因
• 2012年,RET重排在非小细胞肺癌患者中首次被发现;
• RET融合发生频率:NSCLC中约0.6%-0.9%,肺腺癌中略高大约1.2%-2%;
• RET融合主要的检测方法有FISH, IHC, RT-PCR和NGS。
• NTRK是神经营养因子受体络氨酸激酶。它们分别由 NTRK1、NTRK2 和 NTRK3基因编码。一旦与其他的基因发生融合突变,导致了异常激活驱动了肿瘤的发生;
• NTRK融合检测方法:IHC, RNA or DNA NGS, FISH, RT-PCR。
肺癌分子检测的展望和趋势
ctDNA的动态变化与BRAF突变NSCLC靶向治疗的疗效相关
ctDNA清除率越高,靶向治疗的早期疗效越好
液态活检NGS与组织RT-PCR对于METex14检测一致性探索
回顾性分析发现,液态活检NGS指导卡马替尼(Capmatinib )治疗METex14疗效结果相似;
液态活检NGS能够检测出绝大多数METex14阳性的病例,但会漏检部分组织学检测阳性的病例。
液态活检十大研发新方向
图17
总结
• 精准检测助力肺癌个体化精准治疗,从而改善患者预后;
• 肺癌少见突变已步入Biomarker指导的精准治疗时代,针对新靶点新药研发层出不穷;
• 不同检测方法,如IHC、FISH、PCR、Sanger、NGS等具有不同的优势和局限性,临床选择应综合考虑;
• 肺癌作为精准治疗的先行者,液态活检因其无创性和早期预测价值不断被探索。
审核:郭鹏
设计:鹏飞
排版:小明
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